产品名称:多胺氧化酶(PAO)测试盒
产品规格:50管/48样,100管/96样
产品货号:YX-C-PAO,YX-W-PAO
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货号 |
产品名称 |
检测方法 |
规格 |
售价(元) |
YX-C-PAO |
多胺氧化酶(PAO)测试盒 |
可见分光光度法 |
50管/48样 |
900 |
YX-W-PAO |
多胺氧化酶(PAO)测试盒 |
微量法 |
100管/96样 |
1700 |
多胺氧化酶(Polyamine oxidase,PAO)试剂盒说明书(微量法)
正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
多胺氧化酶是催化生物体内多胺氧化的关键酶,通过调节体内多胺水平和生成物的浓度,参与各种植物体对逆境胁迫的反应和生长发育过程。
测定原理:
PAO 催化多胺氧化产生过氧化氢,在过氧化物酶存在的条件下与底物显色,在 550nm 下有特征吸收峰,通过测定吸光值增加速率来反映 PAO 活性。
需自备的仪器和用品:
酶标仪、台式离心机、可调式移液器、96 孔板、研钵、冰和蒸馏水。
试剂组成和配制:
试剂一:液体 120mL×1 瓶,4℃保存;
试剂二:液体 3mL×1 瓶,4℃保存;
试剂三:液体 1.5mL×1 瓶,4℃保存;
试剂四:液体 1.5mL×1 瓶,4℃保存。
粗酶液提取:
1、组织:按照组织质量(g):试剂一体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 试剂一)进行冰浴匀浆,然后 10000g,4℃离心 20min,取上清,置冰上待测。
2、细菌、真菌:按照细胞数量(104 个):试剂一体积(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细胞加入 1mL 试剂一),冰浴超声波破碎细胞(功率 300w,超声 3 秒,间隔7 秒,总时间 3min);然后 10000g,4℃,离心 10min,取上清置于冰上待测。
3、血清等液体:直接测定。
测定步骤:1、酶标仪预热 30min 以上,调节波长至 550nm。
2、样本测定
试剂名称(µL) |
测定管 |
试剂一 |
140 |
试剂二 |
20 |
试剂三 |
10 |
样本 |
20 |
试剂四 |
10 |
迅速混匀,于 550nm 下测定初始吸光值 A1 与 30min 后吸光值 A2。ΔA=A2-A1。 |
PAO 活性计算:
(1)按样本蛋白浓度计算:
单位定义:每 mg 组织蛋白在每 mL 反应体系中每分钟 A550 变化 0.001 为一个酶活力单位。
PAO(U/mg prot)=ΔA×V 反总÷(V 样×Cpr)÷0.001÷T =333.33×ΔA÷Cpr
(2)按样本鲜重计算:
单位定义:每 g 组织在每 mL 反应体系中每分钟 A550 变化 0.001 为一个酶活力单位。
PAO(U/g 鲜重)=ΔA×V 反总÷(W× V 样÷V 样总)÷0.001÷T =333.33×ΔA÷W
(3)按细菌或细胞密度计算:
单位定义:每 1 万个细菌或细胞在每 mL 反应体系中每分钟 A550 变化 0.001 为一个酶活力单位。
PAO(U/104 cell)=ΔA×V 反总÷(500×V 样÷V 样总)÷0.001÷T =0.667×ΔA
(4)按液体体积计算
单位的定义:每 mL 液体样本在每 mL 反应体系中每分钟 A550 变化 0.001 为一个酶活力单位。
PAO(U/mL)=ΔA×V 反总÷V 样÷0.001÷T =333.33×ΔA
V 反总:反应体系总体积,0.2mL;V 样:加入样本体积,0.02 mL;V 样总:加入提取液体积,1 mL;T:反应时间,30 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500: 细菌或细胞总数,500 万。
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