货号：LE-1-219

正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定

测定意义：

MDH （EC 1.1.1.37）广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，线粒体中 MDH 是 TCA 循环的关键酶之一，催化苹果酸形成草酰乙酸；相反，胞浆中 MDH 催化草酰乙酸形成苹果酸。草酰乙酸是重要的中间产物，  连接多条重要的代谢途径。因此 ，MDH  在细胞多种生 理活动中扮演着重要的角色，包括线粒体的能量代谢、 苹果酸-天冬氨酸穿梭系统、活性氧 代谢和抗病性等。根据不同的辅酶特异性，MDH 分为 NAD-依赖的 MDH 和 NADP-依赖的 MDH，细菌中通常只含有 NAD-MDH，在真核细胞中，NAD-MDH 分布于细胞质和线粒体中。

测定原理：

MDHm 催化 NADH 还原草酰乙酸生成苹果酸，导致 340nm 处光吸收下降。

需自备的仪器和用品：

紫外分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1 mL 石英比色皿和蒸馏水。 

试剂的组成和配制：

试剂一： 液体 50mL×1 瓶，-20℃保存；

试剂二： 液体 10mL×1 瓶，-20℃保存；

试剂三： 液体 1mL×1 支 ，-20℃保存；

试剂四、液体 50 mL×1 瓶，在 4℃保存；

试剂五、粉剂×2 支，-20℃保存； 临用前加入 300μL 蒸馏水，充分溶解待用 ；用不完的试剂 分装后-20℃保存，禁止反复冻融。

试剂六、粉剂×2 支，-20℃保存； 临用前加入 300μL 蒸馏水，充分溶解待用 ；用不完的试剂 分装后-20℃保存，禁止反复冻融。

样本测定的准备：

组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离：

1、称取约 0.1g 组织或收集 500 万细胞，加入 1mL 试剂一和 10uL  试剂三 ，用冰浴匀浆器 或研钵匀浆。

2、将匀浆液于 600g，4℃离心 5min。

3、弃沉淀，将上清液移至另一离心管中， 11000g，4℃离心 10min。

4、上清液即胞浆提取物，可用于测定从线粒体泄漏的 MDH（此步可选做）。

5、在步骤 ④ 中的沉淀中加入 200uL 试剂二和 2uL  试剂三 ，超声波破碎（冰浴，功率 20% 或 200W，超声 3 秒，间隔 10 秒，重复 30 次），用于线粒体 MDH 测定。

测定步骤：

1、分光光度计预热 30min 以上，调节波长至 340nm，蒸馏水调零。

2、将试剂四在37℃（哺乳动物）或 25℃（其它物种）水浴 10min 以上。

3、操作表：

将上述试剂按顺序加入 1 mL 石英比色皿中，混匀后立即在 340 nm 波长下记录初始吸光度 A1 和反应 1min 后的吸光度 A2，计算 ΔA=A1-A2。计算公式中乘以相应稀释倍数。

MDHm 活力单位的计算：

1、按样本蛋白浓度计算：

单位的定义：每 mg 组织蛋白每分钟消耗 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活力单位。

MDHm（nmol/min/mg prot）=[ΔA×V 反总÷( ε×d）×10⁹]÷(V 样×Cpr) ÷T

=6430×ΔA÷Cpr

2、按样本鲜重计算：

单位的定义：每 g 组织每分钟消耗 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活力单位。

MDHm（nmol/min/g  鲜重）=[ΔA×V 反总÷( ε×d）×10⁹]÷（W× V 样÷V 样总）÷T

=1299×ΔA÷W

3、按细菌或细胞密度计算：

单位的定义：每 1 万个细菌或细胞每分钟消耗 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活力单位。

MDHm（nmol/min/10⁴ cell）=[ΔA×V 反总÷( ε×d）×10⁹]÷（2000×V 样÷V 样总）÷T

=0.65×ΔA

V 反总：反应体系总体积，8×10^-4 L；ε：NADH 摩尔消光系数，6.22×10³ L / mol /cm； d： 比色皿光径， 1cm；V 样：加入样本体积，0.02mL；V 样总：加入提取液体积 ，0.202 mL； T：反应时间， 1 min；W：样本质量，g；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；2000：细胞或细 菌总数，2000 万。